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GMS150高精度气体调控系统
产品时间:2018-01-24
GMS150高精度气体调控系统可以将Z多4种不同气体进行精确混合。每路输入气体的流量使用热式质量流量计精确测量,并由内置的质量流量控制器进行精准控制,输出的是完全混合的均质气体。气体输入输出使用Prestolok快速安全接头,保证使用过程中的便捷性与安全性。

GMS150高精度气体调控系统可以将zui多4种不同气体进行精确混合。每路输入气体的流量使用热式质量流量计精确测量,并由内置的质量流量控制器进行精准控制,输出的是完全混合的均质气体。气体输入输出使用Prestolok快速安全接头,保证使用过程中的便捷性与安全性。

GMS150高精度气体调控系统可用于二氧化碳、氮气、一氧化碳、甲烷、氨气以及其他气体的浓度控制。

GMS150高精度气体调控系统分为GMS150版和GMS150-MICRO版,其中GMS150版精度更高,GMS150-MICRO版可调控流速更大。

 

应用领域

  •  与植物培养箱、光养生物反应器等联用,

    进行精确气体控制培养

  •  模拟不同CO2浓度环境,研究温室效应

    对植物/藻类的影响

  •  研究CO2浓度与光合作用的关系

  • 模拟烟气等有害气体对植物/藻类的影响

  • 研究植物/藻类对有害气体的处理与利用

     

 

 

技术参数:

  • 测量原理:热式质量流量测量法

  • 可调控气体:空气、氮气、二氧化碳、氧气、一氧化碳、甲烷、氨气等干燥纯净、无腐蚀性、无爆炸性气体,气源需用户自备

  • 调控通道:标配为2通道,通道1Air-N2,通道2CO2,zui多可扩展为4通道

  • 工作温度:15-50

  • 输入/输出接头:Parker Prestolok接头(6mm)

  • 输入压力:3-5bar

  • 密封:氟化橡胶

  • 显示屏:8×21字符液晶显示屏

  • 尺寸:37cm×28×15cm

  • 供电:115-230V交流电

  • 可联用仪器:FMT150藻类培养与在线监测系统、MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、FytoScope系列智能LED光源生长箱、用户自行设计的培养箱或反应器(可提供气路连接方案)等

 

 

                 与中科院海洋所自行设计的培养装置联用的GMS150

 

GMS150版调控参数:

  •  zui小流量范围:0.02 - 1 ml/min

  • zui大流量范围:20 - 1000 ml/min

  • 可定制流量范围:可在zui大流量和zui小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 20-1000 ml/min;通道2(CO2): 0.4-20 ml/min;可调控CO2浓度0.04% - 100%(实际调控浓度与流量有关)

  • 精度:±0.5%,加全量程±0.1%3-5ml/min为全量程±1%,<3ml/min为全量程±2%

  • 稳定性:<全量程±0.1%(参考1ml/min N2

  • 稳定时间:1~2s

  •  预热时间:30min预热达到*精度,2min预热偏差±2%

  •  温度灵敏度:<0.05%/

  •  压力灵敏度:0.1%/bar(参考N2

  • 姿态灵敏度:1bar 压力下与水平面保持90°zui大误差0.2%(参考N2

  •  重量:7kg

 

GMS150-MICRO版调控参数:

  • zui小流量范围:0.2 - 10 ml/min

  • zui大流量范围:100 - 5000 ml/min

  • 可定制流量范围:可在zui大流量和zui小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 40-2000 ml/min;通道2(CO2): 0.8-40 ml/min;可调控CO2浓度0.04% - 100%(实际调控浓度与流量有关)

  •  精度:±1.5%,加全量程±0.5%

  • 重复性:流量<20 ml/min为全量程±0.5%,流量>20 ml/min为实际流量±0.5%

  • 稳定时间:1s

  • 预热时间:30min预热达到*精度,2min预热偏差±2%

  • 温度灵敏度:零点<0.01%/℃,满度<0.02%/

  • 姿态灵敏度:1bar 压力下与水平面保持90°zui大误差0.5 ml/min(参考N2

  • 重量:5kg

 

应用案例:

 

FMT150藻类培养与在线监测系统联用研究蓝藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代谢节律(Cerveny, 2013, PNAS

产地:欧洲

 

参考文献:

  1. Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769
  2. Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902
  3. Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347
  4. Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423
  5. Angermayr S A, et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N2 and CO2 in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189
  6. Acu?a A M, et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249

 

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